全部肿瘤治疗项目

治疗性疫苗与抗原呈递

LM-DC 抗原呈递细胞技术

使用携带肿瘤抗原的减毒李斯特菌载体,在体外刺激患者自身的树突状细胞,再通过抗原呈递引导 T 细胞识别。

LM-DC
技术载体
减毒 LM 载体与自体 DC
样本与检测
抗原信息与外周血细胞
技术特点
体外抗原加载与呈递

项目概览

LM 指李斯特菌载体,DC 指树突状细胞,是抗原呈递细胞(APC)的一类。这条路线将抗原载体与患者自身的 DC 在体外结合,使细胞获得并呈递相应的抗原信息。其主要思路是借助抗原呈递激活体内的 T 细胞,而不是把 T 细胞改造成 CAR-T。加载抗原的 DC 承担免疫信息传递的作用,引导抗原特异性的 T 细胞反应。

作用原理

  1. 01

    载体携带抗原

    选择肿瘤相关抗原或新抗原,通过减毒李斯特菌载体传递相应信息。

  2. 02

    DC 获得并呈递抗原

    在体外培养患者自体细胞,分化并刺激 DC,利用其抗原处理及 MHC I/II 呈递功能。

  3. 03

    引导 T 细胞反应

    加载抗原的细胞承担呈递作用,研究如何引导 CD4+ 和 CD8+ T 细胞产生相应免疫反应。

图示解释作用机制。产生特异性免疫反应不等于取得临床疗效,仍需结合具体证据评估。

技术路线

制备包含两条相互衔接的路径:一条从肿瘤相关检测中确定抗原并构建载体;另一条从外周血单个核细胞(PBMC)获得单核细胞,经培养分化为 DC。两条路径在体外抗原刺激阶段汇合,随后完成质量检测、必要的冻存与复苏。制备所得为自体细胞制品,与直接给予载体疫苗属于不同技术路径。

DC 与巨噬细胞都是 APC 家族成员。它们的培养工艺、质量指标和作用特点不同,相关观察结果需要按细胞类型分别理解。

样本与制备流程

流程展示主要技术环节。取样、制备和质量检测所需时间因方案与样本情况而异。

  1. 01

    抗原确定与样本准备

    结合现有肿瘤资料、必要检测和抗原路线,确定载体需要携带的信息;同时评估细胞采集条件。

  2. 02

    采集与 DC 培养

    通过专业单采获得 PBMC,分离单核细胞并培养分化为 DC,按工艺进行成熟刺激。

  3. 03

    抗原加载与质量检测

    在体外以携带抗原的减毒 LM 刺激 DC,随后检查身份、活率、数量、微生物及残留李斯特菌等指标。

  4. 04

    制品准备与免疫监测

    按需要安排冻存、复苏及使用,持续观察安全性并检测抗原特异性 T 细胞反应,临床复评另行进行。

样本与评估要点
  • 明确抗原来源、现有病理及分子检测信息,判断是否需要额外组织检测。
  • 评估血细胞情况、感染及免疫状况,确认外周血细胞采集是否可行。
  • 核对自体细胞身份与每批制品的质量记录,明确后续观察与复查安排。

观察与随访

免疫反应与后续观察

观察生命体征、血常规、生化及相关免疫指标。ELISpot 等检测可帮助了解特异性 T 细胞反应,结果需要与影像、症状及整体病情分开解读。

质量控制与安全观察

减毒载体和自体细胞仍需要严格的质量控制及安全观察。应关注采集相关不适、发热、过敏、炎症反应及感染风险;“减毒”不代表没有风险。

常见问题

LM-DC 是干细胞技术吗?

DC 是树突状细胞,属于抗原呈递细胞。本项目不以造血干细胞替代或重建造血系统为原理。

使用减毒李斯特菌意味着直接注射细菌吗?

LM-DC 在体外刺激自体 DC,完成制品质控后再使用。这与直接给予载体疫苗是不同技术路径。

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咨询评估安排

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资料依据

公开资料核对:2026 年 10 月 7 日